Тезисы XIX Всероссийской конференции по ветеринарной анестезиологии, реанимации и интенсивной терапии
2 – 4 апреля 2024 г. Москва, отель «Милан»
Возможности регионарной анестезии и анальгезии у экстренного пациента по триажу. Что мы можем здесь и сейчас, когда нет времени на размышления.
Варвара Владимировна Соловьева
старший анестезиолог-реаниматолог клиники «Биоконтроль», г. Москва
solovyevadvm@gmail.com
Анальгезия экстренных пациентов, которые поступают по триажу, является важной, но зачастую сложной задачей для врачей, оказывающих экстренную помощь. Пероральные и внутривенные анальгетики имеют присущие им риски, которые могут ограничивать их использование в определенных группах пациентов, например, у возрастных пациентов, пациентов с сочетанными травмами или необследованных пациентов. Так нестероидные воспалительные препараты могут вызвать повреждение почек и желудочно-кишечное кровотечение и связаны с высокой частотой реакций гиперчувствительности. Опиоиды, если доступны в ветеринарной клинике, хотя и являются «золотым стандартом» в анальгезии, могут вызывать седативный эффект, апноэ и гипотонию. Применение адъювантных анальгетиков в качестве моноанальгезии не обладает удовлетворительным эффектом.
В результате опасений относительно профиля безопасности, отсутствия опиоидных анальгетиков в ветеринарной клинике, наши пациенты часто получают неоптимальное обезболивание в отделении неотложной помощи. [1]
Соблюсти принцип мультимодальности и обеспечить адекватный уровень анестезии помогает применение техник регионарной анестезии.
Обструкция уретры
Обструкция уретры у котов является частым требованием неотложной помощи и эти пациенты часто попадают по триажу. Основная цель лечения – быстрое устранение обструкции без травматизации уретры. Во время процесса разблокировки может произойти травма или разрыв уретры, что часто приводит к необходимости общей анестезии или сильной седации, за исключением самых критических пациентов [2].
Каудальный сакральный блок обеспечивает анестезию промежности, полового члена, уретры, толстой кишки и заднего прохода путем блокады срамных, тазовых и каудальных нервов без потери двигательной функции задних конечностей.
Риск осложнений относительно невелик при сакральной эпидуральной анестезии, поскольку у котов спинной мозг заканчивается в районе S1, и риск прокола спинного мозга или проникновения в субарахноидальное пространство маловероятен. [3]
Возможные осложнения включают: инфекцию или абсцесс в месте инъекции, неспособность техники обеспечить анальгезию и возможность системной абсорбции лидокаина, хотя дозы, описанные для этой процедуры, намного ниже рекомендуемой дозы для внутривенного введения лидокаина. [4]
Избыточный объем инъекции может вызвать расширенную краниальную миграцию препарата с потенциальной блокадой двигательных нервов к тазу. Однако при введении кошкам местного анестетика в дозе 0,1–0,2 мл/кг дисфункции тазовых конечностей не наблюдалось (O’Hearn & Wright, 2011).
Допустимо использовать лидокаин, бупивакаин левобупивакаин и ропивакаин. [5]
Более подробно ознакомиться с техникой можно в алгоритме 2020 AAHA Anesthesia and Monitoring Guidelines for Dogs and Cats [6]
По данным некоторых исследователей спинной мозг у кошек может достигать уровня S1-S3, поэтому применение УЗ навигации позволяет провести пункцию более безопасно [7]
Также для постановки уретрального катетера допустимо использовать блок срамного нерва под контролем УЗ-навигации. Этот блок относится к продвинутым техникам регионарной анестезии, и инъекция выполняется в двух точках по 0,15 мл/кг р-а местного анестетика, справа и слева. Во время инъекции местный анестетик должен распространиться дорсально и латерально от уретры.
Заполненный кишечник может значительно ухудшать визуализацию.
Местные анестетики: лидокаин, бупивакаин, левобупивакаин и ропивакаин [8].
Травмы грудной клетки и торакоцентез
При травмах грудной клетки и/или необходимости провести торакоцентез достаточно простым методом анальгезии, выполняемым вслепую, будет являться блокада межреберных нервов.
Если речь идет о переломах ребер, то блок необходимо проводить как минимум на 2 межреберных промежутка краниальнее и 2 межреберных промежутка каудальнее от области, которую требуется десенсибилизировать.
Объем анестетика от 0,05 мл до 1 мл в каждую точку в зависимости от размера и вида животного.
Допустимо использовать лидокаин, бупивакаин, левобупивакаин и ропивакаин. [9]
Для снижения риска развития пневмоторакса необходимо использовать иглы меньшего диаметра (22G). У животных с избыточной массой тела могут возникнуть проблемы с поиском анатомических ориентиров. [9]
В таком случае при проведении торакоцентеза при пневмо/гидро/гемотораксе (если состояние не жизнеугрожающее). Если позволяет время, -лидокаин 2 мг/кг в кожу, подкожно, мышцу и плевру, подождать 5 минут, создавая давление в месте пункции перед введением иглы/катетера.
Применение техник местной анестезии может оказаться нецелесообразным перед декомпрессией напряженного пневмоторакса, поскольку это процедура, спасающая жизнь.
Интраплевральное введение местных анестетиков
Может потребоваться пациенту с травмой грудной клетки, плевритом. За счет разницы в pH бупивакаин может вызывать боль при введении, поэтому для введения бодрствующему пациенту приготовьте смесь 0,5% (5 мг/мл) бупивакаина (собаки: 0,2 мл/кг = 1 мг/кг, кошки: 0,15 мл/кг = 0,75 мг/кг) исходя из идеальной массы тела, и бикарбонат натрия (1 мэкв/мл). Для буферизации 0,5% раствора бупивакаина (5 мг/мл) требуется смесь 20:0,1 с бикарбонатом натрия в концентрации 1 мэкв/мл (~0,2 мл бупивакаина и 0,001 мл бикарбоната натрия) и нагретая до ~30 °С, максимум 35 °С. Для разведения бупивакаина используйте воду для инъекций. Для серии блоков рекомендована установка торакального дренажа или катетера. [10]
Внутриплевральный бупивакаин может также влиять на вентиляцию легких, вызывая паралич диафрагмы. У животных с хорошим дыхательным резервом редко развиваются клинически значимые нарушения, но следует избегать введения внутриплевральных анестетиков животным с нарушением дыхательной функцией [11]
Абдоминальная боль и интраперитонеальное введение местных анестетиков
В случаях панкреатита или боли в животе бупивакаин (2 мг/кг, разведенный в физиологическом растворе каждые 6 часов, внутрибрюшинно) можно вводить через асептически установленный временный катетер-бабочку для обеспечения анальгезии. Однако он может быть неэффективным при наличии асцита из-за разведения местного анестетика. [12]
Дистальные блоки конечностей при травме пальцев/когтей/подушечек
В случае травматизации данных областей (как на грудных, так и на тазовых конечностях) рационально применять блоки пальцевых нервов: пальцы можно блокировать либо по отдельности, либо полностью, путем введения местного анестетика рядом с самим отдельным пальцем или в перепонку, где пальцевые нервы раздваиваются. Пальцевые нервы проходят как по латеральной, так и по медиальной поверхностям пальцев [13]
Инфильтрационное введение местных анестетиков
Можно использовать в качестве мультимодальной анальгезии при небольших кусаных ранах или для удаления повреждений на коже (L. Snyder and R.Johnson,2015) Растворы местных анестетиков наносятся вокруг области, подлежащей десенсибилизации, путем многократных внутрикожных и/или подкожных инъекций. Часто используется лидокаин (от 0,5% до 2%), поэтому следует рассчитать максимальный объем, доступный для использования. После первого введения иглы и нанесения раствора последующие введения иглы можно производить через десенсибилизированную ткань, так что пациент чувствует только первое введение. Противопоказание- наличие онкологических поражений или абсцессов из-за риска распространения онко -клеток или бактерий.
Объем лидокаина, который следует использовать, зависит от площади, но обычно можно использовать 2–5 мг/кг. Если в качестве адъюванта используется адреналин, общую дозу можно увеличить до 5–8 мг/кг (не превышая максимальную рекомендованную дозировку для вида животного!). Для уменьшения концентрации и увеличения объема лидокаина допустимо разведение стерильным физиологическим раствором (T.Duke-Novakovski et al, 2016)
Применение техник под контролем регионарной анестезии с УЗ-навигацией
Применение этих техник позволяет с минимальной седацией обеспечить адекватную анальгезию как конечностей, так и других областей грудной и брюшной полостей.
Применяя техники регионарной анестезии как с ультразвуковым контролем, так и вслепую, по анатомическим ориентирам, у пациентов, принятых по триажу как отдельно, так и в сочетании с другими методами обезболивания, можно уменьшить использование опиоидов и других системных анальгетиков, при этом обеспечивая мультимодальность, адекватный уровень анальгезии и снижая риск побочных эффектов от применения препаратов в монорежиме.
Литература:
- Caleb P. Canders et al., Ultrasound-guided Nerve Blocks in the Emergency Department, Emergency Medicine Reports, 2018
- Corgozinho KB, Souza HJM, Pereira AN, et al. Catheter-induced urethral trauma in cats with urethral obstruction. J Feline Med Surg 2007; 9:481–486
- O’Hearn & B.Wright, Coccygeal epidural with local anesthetic for catheterization and pain management in the treatment of feline urethral obstruction, Journal of Veterinary Emergency and Critical Care 21(1) 2011, pp 50–52
- Wetmore LA, Glowaski MM. Epidural analgesia in veterinary critical care. Clin Tech Small Anim Pract 2000; 15(3):177–188.
- Grubb Local and regional anaesthesia in dogs and cats: Descriptions of specific local and regional techniques, 2020
- 2020 AAHA Anesthesia and Monitoring Guidelines for Dogs and Cats https://www.aaha.org/globalassets/02-guidelines/2020-anesthesia/anesthesia_and_monitoring_guidelines_final.pdf
- Credie, S. Luna, The use of ultrasound to evaluate sacrococcygeal epidural injections in cats, Can Vet J 2018;59:143–146
- Small animal regional anesthesia and analgesia / edited by Matt Read, Luis Campoy, Berit Fischer, Second edition, Hoboken, New Jersey : Wiley-Blackwell, 2024 pp249-255
- Tamara Grubb1, Heidi Lobprise, Местная и регионарная анестезия у собак и кошек: описание отдельных техник местной и регионарной анестезии (часть 2) СВМ No 3/2021 стр 56-64
- Mathews, et al.,. Analgesia and anesthesia for the ill or injured dog and cat. 2018 pp 362-375.
- Snyder and R.Johnson, Canine and feline anesthesia and co-existing disease, Wiley Blackwell, 2015 pp 320-330
- Silverstein & K.Hopper, Small Animal Critical Care Medicine, 3rd Edition, Elsevier 2023 pp787-795
- Duke-Novakovski et al.,BSAVA Manual of Canine and Feline Anaesthesia and Analgesia third edition, BSAVA 2016 ,pp147-148

